Universität Regensburg

Jens Schlossmann


Anschrift:
Herr Prof. Dr. Jens Schlossmann
Universität Regensburg
Fakultät für Chemie und Pharmazie
Insitut für Pharmazie, Lehrstuhl für Pharmakologie und Toxikologie
Straße:
Universitätsstr. 31
Ort:
93053 Regensburg
Tel.:
0941 943-4771, -4770
Fax:
0941 943-4772

Leistungsprofil:
Praxisrelevante Forschungsgebiete:
  • Stickstoffmonoxid/zyklisches Guanosinmonophosphat-vermittelte Signaltransduktion
  • Molekulare Analyse von cGMP-abhängigen Proteinkinasen und ihre Substraten u.a. des Substratproteins IRAG: Phosphorylierung, Interaktionen, Inhibitoren, Aktivatoren
  • Fluoreszenzspektroskopische Analyse: Calcium-Imaging von primären Zellkulturen, Immunfluoreszenz
  • Analyse von transgenen Mausmodellen u.a. bezüglich des kardiovaskulären, renalen, hämatopoetischen und gastroenterologischen Systems und deren Erkrankungen
  • HPLC-Analytik von zellulären Metaboliten (gemeinsam mit PD Dr. Christoph Dorn/ Prof. Dr. Ekkehard Haen)

Praxisrelevante aktuelle Projekte:
  • NO/cGMP-Signaltransduktion in transgenen IRAG1-/2- und cGKI-/cGKII-Mausmutanten: Effekte auf das kardiovaskuläre, renale und gastroenterologische System, Thrombozyten, Hämatopoese
  • Analyse von primären Zellen (u.a. aus Niere, Herz, Gefäßen, Pankreas): Signaltransduktion, Calciumregulation, Proliferation
  • Expression und Analyse von NO/cGMP-Signalproteinen insbesondere der cGMP-abhängiger Proteinkinase I und II: Aktivatoren und Inhibitoren
  • Proteinkomplexe: Proteininteraktions- und struktur-Analyse

Praxisrelevante Ausstattung/Messmethoden:
  • Laborausstattung für Biochemisch-pharmakologisches Arbeiten inklusive Zellkultur, Molekularbiologie, HPLC, FPLC, Radioisotopenlabor, Photometer, Fluorometer, Fluoreszenzmikroskop, Chemidoc-Bioimaging
  • Kinaseassays, Rezeptorbindungsassays, Calcium-Imaging, Immunoblotting, Proteinreinigung, Immunpräzipitation, Affinitätschromatographie, Proteininteraktionsanalyse
  • Myographie, Aggregometer, Mikrotom
  • Immunhistochemie, Immunassays (ELISA)


Publikationen:
  • Schlossmann, J., Ammendola, A., Ashman, K., Zong, X., Huber, A., Neubauer, G., Wang, G.X., Allescher, H.D., Korth, M., Wilm, M., Hofmann, F. & Ruth, P. Regulation of intracellular calcium by a signalling complex of IRAG, IP3 receptor and cGMP kinase Ibeta. Nature 404, 197-201 (2000).
  • Antl M, v. Brühl ML, Eiglsperger C, Werner M, Konrad I, Köcher T, Wilm M, Hofmann F & Massberg S, Schlossmann J. IRAG mediates NO/cGMP-dependent inhibition of platelet aggregation and thrombus formation. Blood 109, 552-559 (2007).
  • Desch M, Sigl K, Hieke B, Salb K, Kees F, Bernhard D, Jochim A, Spiessberger B, Höcherl K, Feil R, Feil S, Lukowski R, Wegener J, Hofmann F., Schlossmann J. IRAG determines NO- and ANP-mediated smooth muscle relaxation. Cardiovascular Research 86(3), 496-505. (2010)
  • Mauersberger  C, Sager  HB, Wobst J, Dang TA, Lambrecht L, Koplev S, Stroth M, Bettaga N, Schlossmann J, Wunder F, Friebe A, Björkegren JLM, Dietz L, Maas  SL, van der Vorst  EPC, Sandner  P, Soehnlein O, Schunkert  H, Kessler T. Loss of soluble guanylyl cyclase in platelets contributes to atherosclerotic plaque formation and vascular inflammation. Nature Cardiovascular Research 2022 https://doi.org/10.1038/s44161-022-00175-w
  • Schlossmann J, Schinner E. cGMP becomes a drug target. Naunyn Schmiedeberg`Archives of Pharmacology 385 (3), 243-252 (2012)
  • Koehler K, Hmida D, Schlossmann J, Landgraf D, Reisch N, Schuelke M, Huebner A. Homozygous mutation in murine retrovirus integration site 1 gene associated with a non-syndromic form of isolated familial achalasia Neurogastroenterol Motil 2020 Dec;32(12):e13923. doi: 10.1111/nmo.13923 Epub 2020 Jun 22.
  • Biswas S, Kojonazarov B, Hadzic S, Majer M, Bajraktari G, Novoyatleva T, Ghofrani HA, Grimminger F, Seeger W, Weissmann N, Schlossmann J, Schermuly RT. RAG1 Deficient Mice Develop PKG1β Dependent Pulmonary Hypertension. Cells. 2020 Oct 13;9(10):2280. doi: 10.3390/cells910228
  • Wetzl V, Schinner E, Kees F, Hofmann F, Faerber L, Schlossmann J. Involvement of Cyclic Guanosine Monophosphate-Dependent Protein Kinase I in Renal Antifibrotic Effects of Serelaxin. Front. Pharmacol. 7 (2016)
  • Schramm A, Mueller-Thuemen P, Littmann T, Harloff M, Ozawa T, Schlossmann J.Establishing a Split Luciferase Assay for Proteinkinase G (PKG) Interaction Studies. Int J Mol Sci. 2018 Apr 12;19(4). pii: E1180. doi: 10.3390/ijms19041180.
  • Harloff M, Prüschenk S, Seifert R, Schlossmann J. Activation of sGC signalling with Cinaciguat improves impaired kidney function in diabetic mice. Br J Pharmacol. 2022 Jun;179(11):2460-2475. doi: 10.1111/bph.15425


Kooperationsangebot für die Wirtschaft / Praxis:
Bevorzugte Form der Kooperation:
  • Beratung
  • Bachelor-/Master-/Diplomarbeit
  • Doktorarbeit

Angebote der Zusammenarbeit:
  • NO/cGMP-Signaltransduktion in transgenen Mausmutanten: Effekte auf kardiovaskuläres, renales und gastroenterologisches System, Thrombozyten, Hämatopoese
  • Generierung und Screening von primären Zellkulturen: Rezeptorliganden, Kinaseassays, Kinasesubstratanalyse
  • Screening von Kinase-Aktivatoren und -Inhibitoren
  • HPLC-Analytik von Metaboliten (gemeinsam mit PD Dr. Christoph Dorn/ Prof. Dr. Ekkehard Haen)

Bestehende Kooperationen:
Mit Hochschulen:
TU München: T. Kessler / F. Hofmann
Kardiovaskuläre Analyse/ Transgene Mausmodelle
seit 2017/ seit 2007

Universität Erlangen: A. Ludwig, J. Stieber
Kardiovaskuläre Modelle
seit 2021

University California San Diego: S. Taylor
Proteinkinasen
seit 2023

Mit anderen Institutionen:
Universitätsklinkum Gießen: Schermuly
Lungenfunktion von cGMP
seit 2014

Universitätsklinkum Dresden: Köhler/Hübner
Achalasie
seit 2018

Mit Unternehmen:
Bayer Healthcare

Novartis




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